КОМПЛЕКС ЭКСПОРТА МРНК TREX-2 ВЗАИМОДЕЙСТВУЕТ С КОМПОНЕНТОМ HLB FLASH И ПРИВЛЕКАЕТСЯ НА ПРОЦЕССИРОВАННЫЕ МРНК ГИСТОНОВ

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Белки гистоны необходимы для упаковки ДНК в клетках. Нарушения нормальной экспрессии генов гистонов вызывают развитие различных патологий. Одной из ключевых стадий экспрессии генов является экспорт мРНК из ядра в цитоплазму. Белковый комплекс TREX-2 регулирует экспорт основной части поли(A)-содержащих мРНК. Ранее мы показали, что TREX-2 также ассоциирован с мРНП частицами гистонов и участвует в ядерном экспорте мРНК гистонов, которые не содержат поли(A). В данной работе было исследовано взаимодействие белков TREX-2 с аппаратом процессинга мРНК гистонов. Показано, что TREX-2 взаимодействует с белком FLASH, субъединицей HLB тельца, ассоциированного с гистоновым локусом, ключевым компонентом специфического аппарата процессинга мРНК гистонов. TREX-2 комплекс привлекается через взаимодействие с FLASH на процессированную мРНК гистонов.

Об авторах

М. М Куршакова

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энельгердта Российской академии наук

Email: kursha@mail.ru
Москва, Россия

Ю. А Якушева

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энельгердта Российской академии наук

Москва, Россия

С. Г Георгиева

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энельгердта Российской академии наук

академик РАН Москва, Россия

Список литературы

  1. Durovio, R.J., Marzluff, W.F. // RNA Biology. 2017. Vol. 14. No. 6. P. 726–738.
  2. Geisler, M.S., Kemp, J.pp., Durovio, R.J. // Nucleus. 2023. Vol. 14. No. 1, 2293604.
  3. Kemp, J.P., Yang, X.-C., Dominski, Z. et al. // Mol. Biol. Cell. 2021. Vol. 32. No. 9. P. 942–955.
  4. White, A.E., Burch, B.D., Yang, X.-C. et al. // The J. Cell Biol. 2011. Vol. 193. No. 4. P. 677–694.
  5. Yang, X., Sabath, I., Kunduru, L. et al. // The J. Biol. Chem. 2014. Vol. 289. No. 49. P. 33767–33782.
  6. Terzo, E.A., Lyons, S.M., Poulton, J.S. et al. // Mol. Biol. Cell. 2015. Vol. 26. No. 8. P. 1559–1574.
  7. Ma, T., Van Tine, B.A., Wei, Y. et al. // Genes Dev. 2000. Vol. 14. No. 18. P. 2298–2313.
  8. Hur, W., Kemp, J.P., Tarzia, M. et al. // Dev. Cell. 2020. Vol. 54. No. 3. P. 379–394.
  9. Yang, X.-C., Sabath, I., Debski, J. et al. // Mol. Cell. Biol. 2013. Vol. 33. No. 1. P. 28–37.
  10. Huang, Y., Gattoni, R., Stévenin, J., Steitz, J.A. // Mol. Cell. 2003. Vol. 11. No. 3. P. 837–843.
  11. Erkmann, J.A., Sánchez, R., Treichel, N. et al. // RNA. 2005. Vol. 11. No. 1. P. 45–58.
  12. Huang, Y., Steitz, J.A. // Mol. Cell. 2001. Vol. 7. No. 4. P. 899–905.
  13. Fan, J., Wang, K., Du, X. et al. // The EMBO J. 2019. Vol. 38. No. 9, e99910.
  14. Куршакова М.М., Якушева Ю.А., Георгиева С.Г. // ДАН. Науки о жизни. 2024. Т. 514. № 1. C. 44–49.
  15. Fischer, T., Strässer, K., Rácz, A. et al. // The EMBO J. 2002. Vol. 21. No. 21. P. 5843–5852.
  16. Kurshakova M.M., Krasnov A.N., Kopytova D.vol. et al. // The EMBO J. 2007. Vol. 26. No. 24. P. 4956–4965.
  17. Lu, Q., Tang, X., Tian, G. et al. // The Plant J. 2009. Vol. 61. No. 2. P. 259–270.
  18. Jani, D., Lutz, S., Hurt, E. et al. // Nucleic Acids Res. 2012. Vol. 40. No. 10. P. 4562–4573.
  19. Kopytova, D., Popova, V., Kurshakova, M. et al. // Nucleic Acids Res. 2016. Vol. 44. No. 10. P. 4920–4933.
  20. Куршакова М.М., Краснов А.Н., Набирочкина Е.Н., Георгиева, С.Г. // Мол. биол. 2024. Т. 58. № 3. C. 448–461.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025